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細胞周期檢測（流式細胞術）
發布時間： 2022-10-18 點擊次數： 2932次原理
流式細胞周期檢測是一種常見的檢測細胞增殖情況的方法之一，細胞在不同周期時，其內的DNA含量不同。碘化丙啶（PI）作為一種核酸嵌入型染料，能夠進入固定后的細胞中，與細胞內的核酸結合，其熒光強度與DNA含量成正比。通過流式細胞儀檢測不同細胞中的熒光強度，從而判定不同組別中細胞周期發生的變化。
用途
檢測不同組別或處理對某種細胞周期的改變。
材料與儀器
【器材】
流式細胞儀、移液器、槍頭、離心管、離心機、流式細胞儀、水浴鍋、流式管、濾頭；
【試劑】0.25％ 胰蛋白酶溶液、PBS、RNA酶、PI染液、70％ 乙醇溶液（建議提前放入負二十預冷）；步驟
1.以腫瘤細胞為例，將正常生長的對照或處理組腫瘤細胞計數，每組取2×105-3×105個細胞鋪板，待細胞貼壁后，將正常培養基替換為無血清1640培養基，同步化20 h，使得所有細胞都進入相同的細胞周期時期；同步完后，將培養基重新替換為正常含血清培養基，繼續培養24 h；2.用不含EDTA的胰酶將細胞消化，收集細胞，300 g，離心3 min；用吸引器去除培養基，用PBS清洗細胞一次，再次300 g，離心3 min；去除PBS，用提前預冷的70%酒精重懸細胞沉淀，4℃固定過夜；3．4℃，1000 g，離心3-5 min，去除酒精，用PBS清洗3遍，最后一遍去除PBS；加入300 μL PBS，輕輕吹打，重懸細胞沉淀，加入相應量的Rnase至終濃度100 μg/mL，37 ℃水浴鍋中消化30 min；4．上機前加入PI（5 mg/mL）至終濃度50 μg/mL，避光孵育15 min；孵育完后，過300目細胞篩，上機檢測；5.分析數據。注意事項
1. PI為致癌物質，避免用手直接接觸。
2. 細胞數目應該達到2x104個，細胞數目過少影響實驗結果的準確性。3.鋪板的細胞數量以收獲細胞時有足夠的生長空間來動態調節，現在的流式細胞儀靈敏度很高，不需要太多的細胞。4. 在制備時，要清洗干凈酒精，特別注意清洗過程中細胞的損失。離心次數不宜過多，防止細胞丟失。5. 可以用未處理的細胞調試流式細胞儀。6.胰酶不加EDTA常見問題
Q:酒精固定后細胞難以沉淀下來，導致細胞丟失較多；
A:可適當延長離心時間和轉速。
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